日本生研 绿脓菌群检测血清
广州健仑生物科技有限公司
本司长期供应各种进口和国产的细菌分型血清,主要包括:日本生研血清、德国SiFin血清、丹麦SSI血清和国产血清。日本生研公司自创立以来约50年,一直在开发人类疾病的诊断、治疗、预防为主的疫苗和检验试剂。是行业的,其细菌诊断试剂世界,基本上垄断临床微生物市场和日本的公共卫生检测实验室。
我司还提供其它进口或国产试剂盒:登革热、疟疾、流感、A链球菌、合胞病毒、腮病毒、乙脑、寨卡、黄热病、基孔肯雅热、克锥虫病、违禁品滥用、肺炎球菌、军团菌等试剂盒以及日本生研细菌分型诊断血清、德国SiFin诊断血清、丹麦SSI诊断血清等产品。
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沙门氏菌诊断血清、志贺氏菌属诊断血清、大肠艾希氏菌诊断血清、
霍乱弧菌诊断血清、伤寒、副伤寒及变形杆菌诊断菌液、链球菌诊断血清、
绿脓菌群检测用诊断血清、葡萄球菌诊断血清、霍乱弧菌诊断血清、
孟加拉霍乱弧菌诊断血清、小肠结肠·耶尔森菌诊断血清、荚膜型流感菌诊断血清、
军团菌诊断血清、假结核病·耶尔森菌诊断血清、毒素原性大肠菌纤毛抗血清、
单增李斯特菌诊断血清、弯曲菌诊断血清、荚膜型肺炎球菌诊断血清
日本生研绿脓菌群检测血清
绿脓菌群血清 Pseudomonas aeruginosa Antisera | ||
商品编号 | 产品规格 | 包装单位 |
200372 | 绿脓菌群血清 套装 | 2ml 17支 |
| 套装内容 混合血清3支 群类血清14支(A-N) |
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| 混合Ⅰ:A· C· H· I· L |
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| 混合Ⅱ:B· J· K· M |
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| 混合Ⅲ:D· E· F· G· N |
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绿脓菌群血清 单品血清 | ||
商品编号 | 产品规格 | 包装单位 |
213556 | 混合Ⅰ | 2ML |
213563 | 混合Ⅱ | 2ML |
213570 | 混合Ⅲ | 2ML |
213587 | A群 | 2ML |
213594 | B群 | 2ML |
213600 | C群 | 2ML |
213617 | D群 | 2ML |
213624 | E群 | 2ML |
213631 | F群 | 2ML |
213648 | G群 | 2ML |
213655 | H群 | 2ML |
213662 | I群 | 2ML |
213679 | J群 | 2ML |
213686 | K群 | 2ML |
213693 | L群 | 2ML |
213709 | M群 | 2ML |
213716 | N群 | 2ML |
【简单介绍】
沙门氏菌属诊断血清60种a、138种沙门氏菌诊断血清(全套):供所有沙门氏菌诊断分型用。
【详细说明】
沙门氏菌诊断血清本品包括以下规格:
a、138种沙门氏菌诊断血清(全套):供所有沙门氏菌诊断分型用。
O多价血清(8种):O:A-I OMA OMB OMC OMD OME OMF OMG;
H多价血清(11种):HMA HMB HMC HMD HMIII H:E comple H:G comple H:L comple H:Z4 comple H:1 comple H:Non-specific phase;
O群血清(42种):Group A、B、C、D、E、F、G、H、I、J、K、L、M、N、O、P、R、S、T、U、V、W、X、Y、Z、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、65、66、67;
Vi血清(1种);
O单因子血清(22种):O:1、O:2、O:4、O:5、O:61、O:62、O:7、O:8、O:9、O:10、O:12、O:14、O:15、O:19、O:20、O:22、O:23、O:24、O:25、O:27、O:34、O:46;
H相血清(26种):H:a、H:b、H:c、H:d、H:i、H:k、H:r、H:y、H:z、H:z6、H:z10、H:z29、H:z35、H:z36、H:z38、H:z39、H:z41、H:z42、H:z44、H:z52、H:z53、H:z54、H:z55、H:z57、H:z60、H:z61;
H单因子血清(24种):H:f、H:g、H:h、H:m、H:n,x、H:p、H:q、H:s、H:t、H:u、H:v、H:w、H:x、H:2、H:5、H:6、H:7、H:z13、H:z15、H:z23、H:z24、H:z28、H:z32、H:z51;
HR相血清(4种): H:Rz27、H:Rz40、H:Rz45、H:Rz59;
b、60种沙门氏菌诊断血清:供常见沙门氏菌诊断分型用。
包括: O:A-F、Vi、O:2、O:4、O:5、O:7、O:8、O:9、O:10、O:11、O:14、O:15、O:19、O:20、O:27、O:34、O:46、O:4,12、O:9,12、O:3,19、H:a、H:b、H:c、H:d、H:f、H:g、H:h、H:i、H:k、H:m、H:n、H:p、H:r、H:s、H:t、H:u、H:v、H:w、H:x、H:y、H:z、H:z6、H:z10、H:z13、H:z15、H:z28、H:z29、H:2、H:5、H:6、H:7、 H:e,h、H:e,n,x、H:l,v、H:g,p、H:1,2,3,5、H多价1 (a、b、c、d、i)、H多价2 (e,h、e,n,x、f,g、g,m,s、g,p、m,t)、H多价3(k、l,v、r、y、z、z10)、H多价4(1,2、1,5、1,6、1,7、z6);
c、30种沙门氏菌诊断血清:供常见沙门氏菌诊断分型用。
包括: O:A-F、Vi、O:2、O:4、O:7、O:8、O:9、O:10、O:11、O:15、O:19、H:a、H:b、H:c、H:d、H:f、H:h、H:i、H:k、H:s、H:v、H:w、H:z15、H:2、H:5、H:6、H:e,n,x、H:l,v、H:g,p、H:1,2,3,5;
d、11种沙门氏菌诊断血清:供zui常见沙门氏菌诊断分型用。
包括: O:A-F、Vi、O:2、O:4、O:7、O:9、H:a、H:b、H:c、H:d、H:i;
e、沙门氏菌H相诱导血清(53种):供诱导分离沙门氏菌H相用。沙门氏菌诊断血清
【产品明细】
沙门氏菌属诊断血清 | ||
产品名称 | 规格 | 备注 |
沙门氏菌属诊断血清60种 | 1ml×60瓶 | 注册批件 |
沙门氏菌属诊断血清30种 | 1ml×30瓶 | 注册批件 |
沙门氏菌属诊断血清11种 | 1ml×12瓶 | 注册批件 |
沙门氏菌属O多价血清 A-F | 1ml/瓶 | 注册批件 |
沙门氏菌属Vi因子诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
沙门氏菌属诊断血清(全套) | 1ml×160瓶 | 诊断分型 |
沙门氏菌属O多价血清 A-I | 1ml/瓶 | 诊 断 用 |
沙门氏菌属O多价血清 OMA | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属O多价血清 OMB | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属O多价血清 OMC | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属O多价血清 OMD | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属O多价血清 OME | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属O多价血清 OMF | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属O多价血清 OMG | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属H多价血清 HMA | 1ml/瓶 | 检测O抗原 |
沙门氏菌属H多价血清 HMB | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌属H多价血清 HMC | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌属H多价血清 HMD | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌属H多价血清 HMIII | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌 H:E complex | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌 H:G complex | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌 H:L complex | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌 H:Z4 complex | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌 H:1 complex | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌 H: Non-specific phase | 1ml/瓶 | 检测H抗原 |
沙门氏菌诱导血清 | 1ml×53瓶 | 诱导 H 相 |
志贺氏菌属诊断血清 | ||
产品名称 | 规格 | 备注 |
志贺氏菌属诊断血清50种 | 1ml×54瓶 | 注册批件 |
志贺氏菌属诊断血清22种 | 1ml×26瓶 | 注册批件 |
四种多价诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
福氏多价诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
鲍氏多价诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
痢疾1型诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
痢疾2型诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
宋内氏1相诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
宋内氏2相诊断血清 | 1ml/瓶 | 注册批件 |
大肠艾希氏菌诊断血清 | ||
产品名称 | 规格 | 备注 |
肠道致病性大肠艾希氏菌诊断血清15种 | 1ml×18瓶 | 注册批件 |
侵袭性大肠艾希氏菌诊断血清11种 | 1ml×11瓶 | 供研究用 |
产毒性大肠艾希氏菌诊断血清10种 | 1ml×10瓶 | 供研究用 |
出血性大肠艾希氏菌O157诊断血清 | 1ml/瓶 | 供研究用 |
大肠艾希氏菌H7诊断血清 | ml/瓶 | 供研究用 |
霍乱弧菌诊断血清 | ||
产品名称 | 规格 | 备注 |
O1群霍乱弧菌诊断血清3种 | 1ml×11瓶 | 注册批件 |
O1群、O139霍乱弧菌多价诊断血清 | 1ml/瓶 | 供研究用 |
O139霍乱弧菌诊断血清 | 1ml/瓶 | 供研究用 |
伤寒、副伤寒及变形杆菌诊断菌液 | ||
产品名称 | 规格 | 备注 |
伤寒、副伤寒及变形杆菌诊断菌液 | 10ml×5瓶 | 注册批件 |
伤寒、副伤寒及变形杆菌诊断菌液 | 10ml×8瓶 | 注册批件 |
伤寒、副伤寒及变形杆菌诊断菌液(质控) | 10ml×5瓶 | 注册批件 |
伤寒、副伤寒及变形杆菌诊断菌液(质控) | 10ml×8瓶 | 注册批件 |
日本生研绿脓菌群检测血清
目前,虽然对于细菌菌膜形成的具体分子机制还不是很了解,但是通过各种内部或外部环境因素的影响来观察单核细胞增生李斯特菌菌膜的形成差异,可以为进一步了解调控菌膜形成的关键因子提供一定的理论依据。
1、菌株种类
Chae等比较了13株单核细胞增生李斯特菌在玻璃表面静置培养形成菌膜的情况,经24小时的培养后,不同菌株吸附于表面的能力和细胞数差别存在明显差异日本生研血清。Kalmokoff等的研究表明不同单核细胞增生李斯特菌分离株,在食品级不锈钢表面的吸附能力和菌膜形成能力存在明显差异,但吸附程度和菌株的血清型或来源并没有直接关系日本生研血清。Borucki等通过对80株单核细胞增生李斯特菌菌膜形成能力的筛选来确定菌膜形成、血清型和所来源的环境之间是否存在密切的关系,结果显示在不同血清型中并没有检测到菌膜形成存在明显差异日本生研血清。
Folsom研究了有遗传学关系的菌株是否具有相似的菌膜形成能力,并且何种营养物以何种浓度可以影响不同菌株菌膜的形成能力,结果表明11株单核细胞增生李斯特菌在所有的培养基上形成的菌膜量都相同,其中14株在TSB中比在DTSB中产生的菌膜量多,5株菌在DTSB中产生的菌膜量比在TSB中多。在TSB中4b血清型比1/2a血清型菌膜量多,但在DTSB中,1/2a血清型产生的菌膜比4b血清型要多。虽然基因型与菌膜的生成量之间没有直接关系,但1/2a血清型和4b血清型的菌株在调节菌膜显型上存在差异日本生研血清。
2、粘附材料
固体表面的物理特性可以影响细菌的初始粘附能力,对于菌膜的形成非常重要。细菌的粘附与介质的临界表面张力相关,高自由能和潮湿的介质表面可以提高细菌的粘附能力。细菌在亲水性表面(不锈钢、玻璃等)比在疏水性表面(橡胶和其它塑料)的粘附量多。
(1)材料种类
不同材料其表面疏水性、电荷含量等不同,这些因素均会导致菌膜形成量的差异。Blackman研究了单核细胞增生李斯特菌在不锈钢、特弗伦、尼龙和聚酯纤维地板密封剂表面菌膜的形成情况日本生研血清。在21℃、TSB培养基中聚酯纤维地板密封剂的菌膜形成能力zui强,尼龙的zui弱。用基础培养基会导致在聚酯纤维地板密封剂上没有菌膜的形成,在不锈钢上菌膜量减少。在10℃菌膜生成量减少,但是特弗伦和不锈钢在TSB中培养18天后仍然有23%-24%覆盖量。Smoot报道了单核细胞增生李斯特菌在聚合物和橡胶材料表面粘附程度要大于在不锈钢表面的强度日本生研血清。
虽然不同的实验条件和实验菌株会导致结果的差异,但是从中我们可以肯定单核细胞增生李斯特菌在不同材料的表面,菌膜的形成是有差异的。
日本生研绿脓菌群检测血清
我司还提供其它进口或国产试剂盒:登革热、疟疾、流感、A链球菌、合胞病毒、腮病毒、乙脑、寨卡、黄热病、基孔肯雅热、克锥虫病、违禁品滥用、肺炎球菌、军团菌等试剂盒以及日本生研细菌分型诊断血清、德国SiFin诊断血清、丹麦SSI诊断血清等产品。
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At present, although the specific molecular mechanism of bacterial membrane formation is not well understood, the differences in the formation of Listeria monocytogenes can be observed by the influence of various internal or external environmental factors, The formation of the key factors to provide a theoretical basis.
1, strain types
Chae et al compared 13 strains of Listeria monocytogenes cultured on glass surface to form a bacterial membrane. After culturing for 24 hours, the ability of different strains to adsorb on the surface and cell number differed significantly. Kalmokoff and other studies have shown that different Listeria monocytogenes isolates on the surface of stainless steel food-grade adsorption capacity and ability to form significant differences in the formation of bacteria, but the degree of adsorption and strains of serotypes or sources and is not directly related to the Japanese Health Institute serum . Borucki et al. Determined the formation of bacterial membrane by screening 80 strains of Listeria monocytogenes to determine whether there is a close relationship between the serotype and the environment from which they were derived. The results showed no detection in different serotypes There are significant differences to the formation of bacterial membrane Japanese Health Institute serum.
Folsom studied whether the genetically related strains have similar ability to form bacteria, and what nutrient concentrations can affect the ability of different strains of membrane formation, the results showed that 11 strains of Listeria monocytogenes in all Had the same amount of bacteria in the culture medium, of which 14 strains produced more TSB than in DTSB and 5 strains produced more bacteria in TSB than in DTSB. The serotype 4b serotypes were more serotype 1 / 2a serotypes in TSB, but serotype 1 / 2a serotypes produced more bacterial biofilms than serotype 4b in DTSB. Although there is no direct relationship between the genotype and the formation of bacterial membrane, strains of serotype 1 / 2a and serotype 4b have differences in the regulatory phenotypes of Japanese students' sera.
2, adhesive material
The physical properties of a solid surface can affect the initial adhesion of the bacteria and are important for the formation of the bacterial membrane. Bacterial adhesion is related to the critical surface tension of the medium, and high free energy and moist media surfaces enhance bacterial adhesion. Bacteria have more adhesion on hydrophilic surfaces (stainless steel, glass, etc.) than on hydrophobic surfaces (rubber and other plastics).
(1) material types
Different materials of its surface hydrophobicity, charge content, etc., these factors will lead to differences in the amount of membrane formation. Blackman studied the formation of Listeria monocytogenes on biofilms on stainless steel, Teflon, nylon and polyester floor sealants. At 21 ° C, polyester fiber floor sealants in TSB medium had the strongest ability to form the membrane and nylon was the weakest. The use of basal media resulted in no bacterial film on the polyester floor sealant, and the amount of bacteria in the stainless steel decreased. Membrane production decreased at 10 ° C, but Teflon and stainless steel still had 23% -24% coverage after 18 days of incubation in TSB. Smoot reported that Listeria monocytogenes adhered to the surface of polymer and rubber materials to a greater extent than Nipponbare serum at the surface of stainless steel.
Although different experimental conditions and experimental strains lead to differences in results, from which we can be certain Listeria monocytogenes in different materials on the surface, the formation of the membrane is different.