LoVo细胞传代细胞,活性好、存活率高、质量保证,生长状态良好,没有细菌 真菌 支原体等微生物污染。LoVo细胞一般以T25培养瓶包装,容积75ml细胞数量可达10的6次方左右。
细胞名称:人结肠癌细胞;LoVo
规格:T25培养瓶,1×106cells
形态特征: 上皮细胞样
生长特性:贴壁
产品描述
该细胞是1971年从诊断为结肠腺癌的56岁白人男性的一个左锁骨上区的转移灶建系的。癌基因c-myc、K-ras、H-ras、N-ras、Myb和fos的表达呈阳性;未检测到sis和N-myc的表达。它在裸鼠中能成瘤;表达肿瘤特异的核基质蛋白蛋白CC-3和CC-4。
培养条件:F-12K/RPMI-1640 10%FBS
传代方法:1:3~1:9传代;2-3天换液一次。
STR位点信息:
STR Profile | AMEL | CSF1PO | D13S317 | D16S539 | D5S818 | D7S820 | TH01 | TPOX | vWA |
LoVo | X Y | 11 13 14 | 8 11 | 9 12 | 11 12 13 | 9.3 10 11 | 9.3 | 8 9 | 17 18 |
LoVo细胞复苏时如何换液呢?
1冻存细胞取出后37℃速溶,取15ml离心管,加入10ml含血清培养基,将冻存管中液体(通常1.5ml)也加入离心管中,习惯轻吹几下混匀,1200转常温离心5min,去掉上清,加入5ml含血清培养基,轻吹制成细胞悬液,加入到培养瓶中,即可。
注意,新复苏的LoVo细胞不要经常去看去动。
换液的话,只要把培养基吸出,再加入新的培养基就可以了
如果你复苏的细胞长得很不均匀,可以*消化下来再混匀后在重新加进去(像正常细胞一样做)。
两种方案可供选择:
一、复苏时,行离心,弃上清后,种入瓶中。主要目的是防止DMSO对细胞造成损害,但刚复苏的细胞教脆弱,离心易导致细胞破碎。
二、LoVo细胞复苏时,直接将冻存管里的液体倒入培养瓶中,另外添加适量的培养基,孵箱24h,待贴壁后行常规换液。省去了离心一步,避免离心时细胞破裂。但DMSO未能去除,长时间培养可能会对细胞有损害。个人觉得第二种方案较方便。
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