双荧光素酶报告基因测试

            双报告基因用于实验系统中作相关的或成比例的检测，通常一个报告基因作为内对照，使另一个报告基因的检测均一化。检测基因表达时双报告基因通常用来瞬时转染培养细胞，带有实验报告基因的载体共转染带有不同的报告基因作为对照的第二个载体。通常实验报告基因偶联到调控的启动子，研究调控基因的结构和生理基础。报告基因表达活力的相对改变与偶联调控启动子转录活力的改变相关，偶联到组成型启动子的第二个报告基因，提供转录活力的内对照， 使测试不被实验条件变化所干扰。通过这种方法，可减少内在的变化因素所削弱的实验准确性，比如，培养细胞的数目和活力的差别，细胞转染和裂解的效率。

              使用萤火虫荧光素酶，结合氯霉素乙酰转移酶（CAT），β-半乳糖苷酶（β-Gal），或葡萄醛酸糖苷酶（GUS）的双报告基因，近几年已普遍使用。但这些双报告基因组合削弱了荧光 素酶操作的优势 , 比如荧光素酶测试和定量可在几秒钟内进行， 但CAT，β-Gal和GUS测试法，则在定量前需要长时间的保温。另外，这些报告基因受限于它们的灵敏度和线性应答范围，必须注意不要超过这些范围，内源性细胞活力也会干扰这类报告基因的使用。许多类型的细胞有内源β-Gal或GUS表达，不利于准确定量报告基因表达，胞内去乙酰酶活力干扰CAT活力测试。尽管在高温下预处理细胞裂解液，会降低内源性β-Gal和CAT测试的干扰，但这些处理也会快速失活荧光素酶。因此，在此类双报告基因检测中， 必须以不同的步骤分别处理共转染的细胞裂解液。

           理想的双报告基因方法应该使用户能够以萤火虫荧光素酶所具有的速度，灵敏和线性范围对同一样品中的两个报告基因同时测定。这在传统的报告基因，如CAT，β-Gal和GUS是不可能的，由于它们测试化学，处理要求所固有的局限。相反，结合萤火虫 （ Photinus pyralis ）和海洋腔肠 （ Renilla reniformis ） 双荧光素酶，Promega 的双荧光素酶报告基因测试 （DLR）系统可满足这些要求，在单管中完成这些测试。