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TL6000叶绿素热释光测量系统

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公司名称北京易科泰生态技术有限公司
品牌PSI
型号
所在地北京市
厂商性质生产厂家
更新时间2024/12/5 17:20:04
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产品标签:

叶绿素仪荧光仪热释光测量仪荧光成像

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公司介绍主营产品

北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为国家高新技术企业，总部位于北京中关村翠湖云中心，致力于“生态、农业、健康”科学研究与监测/检测技术方案推广、研发与应用服务，营业范围主要包括：

1) 自然科学研究与实验发展，生态-资源-环境实验研究与监测/检测技术

2) 农业科学研究与实验发展，作物表型组学研究技术、种质资源检测鉴定与保护技术等

3) 医学研究与实验发展，生物医学研究技术、能量代谢测量技术、中医药研究技术等

4) 技术开发、转让、咨询、服务及国际仪器设备营销

易科泰生态技术公司设立有如下研究实验发展机构：

1) EcoTech^®实验室（北京），配备有国际实验研究检测技术仪器装备，如叶绿素荧光成像系统、多光谱荧光成像系统、高光谱成像系统、红外热成像仪、动物呼吸代谢测量系统、人体能量代谢测量系统等，可提供作物表型分析与种质资源检测鉴定、生物安全与生物检测、食品检测、中药品质检测鉴定、动物能量代谢测量等实验分析服务与合作研究。

2) 易科泰光谱成像与无人机遥感技术研究中心（西安），致力于光谱成像特别是高光谱成像创新应用研发集成、近地遥感与无人机遥感技术研发集成等。

3) 阿拉善蒙古牛生态牧业研究院，致力于以国家畜禽遗传资源保护物种蒙古牛为旗舰的农业种质资源保护与可持续利用、草原生态保护与可持续利用研究与实验发展。

4） 易科泰生态医学研究所（内蒙阿拉善），致力于民族医学特别是中医、蒙医与生态健康研究实验发展

易科泰生态技术公司与全球几十家国际科研仪器技术公司建立有代理关系或合作关系，如美国Sable公司（动物能量代谢测量研究）、捷克PSI公司（叶绿素荧光技术、植物表型分析技术等）、芬兰Specim公司（高光谱成像技术）、法国YellowScan公司（激光雷达技术）、欧盟CEITEC研究中心（LIBS技术）、英国ADC公司（植物光合作用）等，与国际合作引进推广了大量优异的研究技术和仪器技术，为我国农业、林业、水资源管理、生态环境研究及医学健康等领域科技进步提供了有力的技术支撑。公司还与捷克PSI植物与藻类表型分析研究中心、欧盟CEITEC激光光谱学实验室、美国Sable公司动物能量代谢实验室、西班牙BCN无人机遥感中心建立合作关系，致力于国际技术的推介、学术交流、培训、人才培养（如博士生培养等）、研究合作等。

“工欲善其事，必先利其器”，易科泰生态技术公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态、农业、健康研究与事业发展提供优异技术服务与技术方案。

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叶绿素荧光成像，多功能高光谱成像，高通量表型成像分析,FMS能量代谢测量系统

产品简介在线询价

TL叶绿素热释光测量系统是目前唯yi商用化的叶绿素热释光测量仪器，针对研究PSII能量水平结构进行了专门设计。PSII反应中心光诱导电荷分离导致储存了吸收光能的激发电子对的累积。加热诱导这些激发电子对的重组，从而引发光释放，并在一定温度范围内形成特异性热释光曲线。根据不同释光曲线的形状、峰位和峰值，可以研究分析关于特定激发电子对的能量稳定性及PSII反应中心功能等。

TL6000叶绿素热释光测量系统产品信息

热释光(Thermoluminescence，缩写TL)是晶体受到辐射照射后，产生了自由电子。这些电子被晶格缺陷俘获而积攒起来，在加热过程中以光形式释放出来。叶绿素热释光则是由于活化能垒在生理温度下限制了诸如电子再结合等暗反应，因此光化学反应中分离的电子对稳定存在于电子载体中。在热刺激下， S2QA-，S2QB- 和 S3QB-电子对的再结合，使PSII中激发的单线态叶绿素分子发出热释光。然后，逐渐升高温度会增加再结合的比率，从而激发不同类型的电子对形成TL谱带。叶绿素热释光能够揭示光合放氧复合物（OEC）稳定性及PSII总体完整性、QB受体损伤及叶绿体内腔 pH值变化等光系统 II的深层运转机理。

TL叶绿素热释光测量系统是目前唯' 一商用化的叶绿素热释光测量仪器，针对研究PSII能量水平结构进行了专门设计。PSII反应中心光诱导电荷分离导致储存了吸收光能的激发电子对的累积。加热诱导这些激发电子对的重组，从而引发光释放，并在一定温度范围内形成特异性热释光曲线。根据不同释光曲线的形状、峰位和峰值，可以研究分析关于特定激发电子对的能量稳定性及PSII反应中心功能等。TL6000为这一系统的最新型号，最大测量范围为-100°C到+200°C，使用范围更宽，可以对低温、高温段热释光进行研究。

TL6000叶绿素热释光测量系统

应用领域

1、无损伤测量PSII电子传递

2、 PSII对生物/非生物胁迫与结构修饰的适应和应答

3、胁迫条件下叶绿体内能量不平衡的敏感性检测

4、类囊体膜PSII氧化还原反应

5、基于峰值温度转换，对供体侧与受体侧的氧化还原电位变化进行解释

6、通过测量热释光震荡模式，指示S状态转换和放氧复合体状态

典型样品

植物叶圆片

各种微藻

叶绿体悬浮液

类囊体悬浮液

工作原理

热释光(Thermoluminescence，缩写TL)是晶体受到辐射照射后，会产生自由电子，这些电子被晶格缺陷俘获而积攒起来，在加热过程中以光形式释放出来。其基本的实验过程是将叶片快速冷冻到某一温度，之后给叶片一个足够强，但时间尽量短（一般<5µs）的单反转光（single turn-over ﬂash），用于诱导每个PSII反应中心发生仅一次的电荷分离；然后逐渐升温，同时测量叶片放出的热释光，绘制TL谱带。

TL6000叶绿素热释光测量系统

TL热释光测量系统使用能量足够强的LED光源，所释放5-10µs的方波脉冲能够饱和所有的PSII反应中心，其温度控制单元可以在降温后，再使样品的温度以0.1℃/sec到1.5℃/sec的速率线性增加。不同的闪光序列及样品处理能够使样品处于不同的能量状态，不同的温度下释放的光能源自光合机构的不同结构。分析释光曲线的形状、峰位和峰值，可以研究分析关于特定激发电子对的能量稳定性及PSII反应中心功能等。

热释光（TL）谱带的来源及意义

TL6000叶绿素热释光测量系统

不同型号的控温方式与范围

具体型号	控温方式	控温范围
TL 6000/ST标准版	Peltier控温器+水冷单元	-25℃到+70℃
TL 6000/ET温度扩展版	电阻加热器+液氮制冷单元	-100℃到+200℃

系统组成

TL系列植物光合热释光测量系统由3部分组成：主控制分析单元、外部制冷单元、测量室。

主控制分析单元：根据用户定义方案或软件内置的实验程序来执行实验过程并采集数据。彩色显示屏可实时显示测量曲线。

测量室：内置四个关键组成部分：光源、光电倍增管传感器、温度控制器、样品盘。

外部制冷单元：

水冷单元（TL 6000/ST标准版配备）：包含一个电子控制的抽水泵和内部储水的制冷器，用于测量室降温。

液氮制冷单元（TL 6000/ET温度扩展版配备）：将液氮罐通过管路连接到测量室，通过电子控制的低温输出阀可以将测量室温度控制到最 '低-100℃。同时也用于测量结束后给测量室降温。

技术参数

· 温度范围：

TL 6000/ST标准版：-25℃到+70℃

TL 6000/ET温度扩展版：-100℃到+200℃

· 控温模式：线性升温

· 最大线性升温速度：TL 6000/ST标准版1.5ºC/sec，TL 6000/ET温度扩展版1.8ºC/sec

· 温度调控方式：TL 6000/ST标准版：Peltier控温器+水冷单元；TL 6000/ET温度扩展版：电阻加热器+液氮制冷单元

· 过热保护：提供

· 环境光保护：提供

· 控制模式：手动（恒温）；程序设定温度曲线

· 样品盘：镀金铜盘，TL 6000/ST标准版直径14mm，TL 6000/ET温度扩展版直径22mm

· 测量样品：藻类、蓝藻、叶绿体悬浮液，叶片等

TL6000叶绿素热释光测量系统

· 激发光源波长：623nm

· 单反转饱和脉冲：最大光强300000µmol(photons).m-2.s-1

· 光化光：最大光强2000µmol(photons). m-2.s-1

· 探测传感器：通过软件灵敏控制的光电倍增管

· 光谱响应范围：300nm-900nm

· 最小采样周期：100ms

· 接通延迟：100ms

· 控制：用户可通过专用编程语言自定义程序控制仪器测量过程

· 通讯：RS232串口/USB

· 软件：FluorWin 3.7

· 电源：90V-240V，50-60Hz

操作软件与实验结果

TL6000叶绿素热释光测量系统

典型应用

TL6000叶绿素热释光测量系统

中科院植物所卢从明研究员是国内最早将TL热释光技术用于植物光合研究的科学家之一，其领导的团队也一直位于这一研究的国际最前'沿。上图即为2016年发表的文献，通过测量施加DCMU和不同光照条件的叶绿素热释光曲线，评估谷'胱甘肽还原酶2对拟南芥PSII维持功能的作用（Ding，2016）。

产地：欧洲

参考文献：

· O El-Sheekh, M. M., Prášil, O., El-Mohsnawy, E. (2021) Physiological And Spectroscopical Changes Of The Thermophilic Cyanobacterium Synechococcus Elongatus Under Iron Stress And Recovery Culture. Acta Physiologiae Plantarum, 43:72.

· Ermakova, M., Bellasio, C., Fitzpatrick, D., Et Al. (2021) Upregulation Of Bundle Sheath Electron Transport Capacity Under Limiting Light In C4 Setaria Viridis. The Plant Journal, 106, 1443 – 1454.

· Wen, X., Yang, Z., Ding, S., Et Al. (2021) Analysis Of The Changes Of Electron Transfer And Heterogeneity Of Photosystem Ii In Deg1-Reduced Arabidopsis Plants. Photosythesis Research, 150, 159–177.

· Kuroda, H., Kawashima, K., Ueda, K., Ikeda, T., Et Al. (2020). Proton Transfer Pathway From The Oxygen-Evolving Complex In Photosystem Ii Substantiated By Extensive Mutagenesis. Biochimica Et Biophysica Acta (Bba) -Bioenergetics, 148329.

· Nilsson, A. K., Pěnčík, A., Johansson, O. N., Bånkestad, D., Et Al. (2020). Psb33 Protein Sustains Photosystem Ii In Plant Chloroplasts Under Uva Light. Journal Of Experimental Botany.

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· Krishna P. S., Styring S. & Mamedov K. (2019) Photosystem Ratio Imbalance Promotes Direct Sustainable H2 Production In Chlamydomonas Reinhardtii. Green Chemistry.

· Shevela, D., Ananyev, G., Vatland, A. Et Al (2019) “Birth Defects” Of Photosystem Ii Make It Highly Susceptible To Photodamage During Chloroplast Biogenesis. Physiologia Plantarum.

· Takagi, D., Ifuku, K., Nishimura, T., & Miyake, C. (2018). Antimycin A Inhibits Cytochrome B559-Mediated Cyclic Electron Flow Within Photosystem Ii. Photosynthesis Research.

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· Partensky F., Mella-Flores D., Six C. Et Al. (2018) Comparison Of Photosynthetic Performances Of Marine Picocyanobacteria With Different Configurations Of The Oxygenevolving Complex. Photosynth Res.

· Takagi D., Ifuku K., Nishimura T. And Miyake C. (2018) Antimycin A Inhibits Cytohrome B559-Mediated Cyclic Electron Flow Within Photosystem Ii. Photosynth Res.

关键词：传感器加热器控制器