1.NK 细胞的制备
1)制备NK 的方法参见*章之第四节。
2)悬浮NK 于接种培养液中,细胞浓度调至106/ml。
2.培养基接种NK 细胞
1)制备饲养细胞(PBMC)方法参见*章*节。
2)于4℃用300×g 离心饲养细胞12min。
3)被离心的饲养细胞悬浮于饲养培养液中,细胞浓度调至2×106/ml。
4)用强度5000radγ射线照射饲养细胞,于4℃用300×g 离心饲养细胞12min,将离心细胞再悬浮于饲养细胞培养液中,饲养细胞浓度调至2×106/ml。
5)在6 块96 孔培养板的各孔中加100μl 上述饲养细胞悬液(总量用60ml 饲养细胞悬液,含1.2×108 个饲养细胞)。
6)将96 孔板置37℃孵箱预温,直到加入NK 细胞。
7)将NK 细胞悬浮于接种培养基液中,并于预温的96 孔板中加入100μlNK 细胞,使成为10 细胞/孔、5 细胞/孔和2.5 细胞/孔的三种类型板,而且每种类型重复二块板。
8)将培养板置5%CO2 孵箱中37℃培养。
3.NK 细胞的再刺激(接种后2-3 天,主要依赖于饲养细胞)
1)从每孔中轻轻移弃100μl 上清液。
2)每孔中加入含有经照射的饲养细胞(2×106 细胞/ml)的NK 克隆培养液100μl。此培养液的制备方法如下:
(1)融化饲养细胞,移至50ml 试管中。
(2)轻轻地加入培养液30ml,混匀后用5000radγ射线照射饲养细胞。
(3)用300×g 离心饲养细胞12min,并计数饲养细胞数量。
(4)按细胞计数结果,将饲养细胞悬浮于NK 克隆培养液中,调至细胞浓度为2×106/ml。
4.换液(6-8 天)从每孔中轻轻移弃100μl 上清液,并加入新鲜NK 克隆培养液100μl。
5.检测NK 细胞的生长状况(9-10 天)如检查有细胞生长,按第8 天的操作换液。
6.分离克隆(11-15 天)
1)当培养基液颜色变黄时,证明细胞已生长,在96 孔板上将生长的NK 按1 孔分为2 孔,2 孔分为4 孔,4 孔分为8 孔的方式分离克隆培养。
2)在96 孔板上扩增克隆,并重复第7 天的操作。
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